细胞培养板因为能给细胞实验节约时间，节约试剂材料费用，可以同时设立多个动态变量方便观察检测等，是细胞培养实验中常用和重要的耗材。但是，你能根据自身需求选择正确的培养板么？你会正确使用培养板吗？对如何处理培养板是否也有困惑？
细胞培养板依底部形状的不同可分为平底和圆底(U型和V型);培养孔的孔数有6、12、24、48、96、384、1536 孔等;根据材质的不同有Terasaki板和普通细胞培养板。具体选择时根据培养细胞的类型、所需培养体积及不同的实验目的而定。
平底和圆底（U型和V型）培养板的区别和选择
1）贴壁细胞一般用平底培养板；
2）悬浮型细胞的培养一般用V型；
3）U型培养板亦多用于培养悬浮型细胞 ；
4）V型培养板有时用做免疫学血凝集的实验。
不同形状的板子自然有不同用途
平底的什么类型的细胞都可用，但当细胞数目较少，如做克隆时，就用96孔平底板。
另外﹐做MTT等实验时﹐无论贴壁和悬浮细胞﹐一般均用平底板。
至于U或V型板﹐一般在某些特殊要求时才使用。如在免疫学方面﹐当做两种不同淋巴细胞混合培养时﹐需要二者相互接触以刺激。因此﹐一般需要U型板﹐因细胞会由于重力的作用而聚集在一个很小的范围內，V型板的用途更少﹐一般用于细胞杀伤实验时﹐为了使效靶细胞紧密接触﹐常使用V型板﹐但这种实验也可用U型板替代(加入细胞后﹐低速离心）。
如果是养细胞的话， 通常是运用平底的， 另外要特別注意材质， 标示"Tissue Culture (TC) Treated"就是养细胞用的。
圆底的通常是拿来做分析， 化学反应， 或是保存样品用。因为圆底比较好将液体吸得干净， 如果用平底的就不好吸了。不过， 如果你是要测吸光值的话， 一定要买平底的才行。
大部分细胞培养都用平底培养板，便于镜下观测、有明确的底面积、细胞培养液面高度相对一致，还便于MTT检测。
圆底培养板主要用于同位素掺入的实验，需要用细胞收集仪收集细胞的培养，如“混合淋巴细胞培养”等。
孔数的选择
流式一般用 6 孔，MTT 一般用 96 孔，细胞爬片一般用 24 孔等，要具体根据你的实验来定。
Terasaki 板和普通细胞培养板的区别
Terasaki plate 主要是用于晶体学研究，产品设计便于对晶体的观察与结构分析。有 sitting 和 handing drop 两种方法。两种方法应用产品的外形结构也不同，材料上选择 crystal class polymer，特殊的材料有利观察晶体结构。
细胞培养板主要材料是 treated sufface，便于细胞贴壁生长与伸展。当然还与浮游细胞的生长材料，降低结合表面积有关，取决于实验材料上的应用与对材料的选择。
细胞培养板与酶标板的区别
用多孔细胞培养板测吸光度肯定可以，可以用它来做样品的蛋白定量和 MTT 检测。
区别：酶标板一般要比细胞培养板贵，细胞板主要做细胞培养，但也可以用来测蛋白浓度；酶标板包括包被板和反应板，一般不能用做细胞培养，它主要做免疫酶联反应后的蛋白检测，它需要更高的要求还需要特定的酶标工作液。
常用培养板的孔底面积及推荐加液量
不同孔板所加培养液的液面都不宜太深，一般在 2-3 mm 范围，结合不同孔的底面积就可算出各培养孔的适宜加液量。若加液量过多会影响气体（氧气）交换，而且在搬动过程中易溢出造成污染。具体所加细胞密度依实验的目的不同灵活掌握。
附培养皿面积：
| 培养器皿 | 面积（cm2） | 培养液量（ml） | 细胞量 |
| 96 孔培养板 | 0.32 | 0.1 | 105 |
| 24 孔培养板 | 2 | 1.0 | 5×105 |
| 12 孔培养板 | 4.5 | 2.0 | 106 |
| 6 孔培养板 | 9.6 | 2.5 | 2.5×106 |
| 3.5 cm 培养皿 | 8 | 3.0 | 2×106 |
| 6 cm 培养皿 | 21 | 5.0 | 5.2×106 |
| 10 cm 培养皿 | 55 | 10.0 | 13.7×106 |
| 25 cm2 培养瓶 | 25 | 5.0 | 5×106 |
| 75 cm2 培养瓶 | 75 | 15～30 | 2×107 |
使用培养板时常见问题解答
1、96，24孔培养板或培养皿的盖子都很松，这样是方便了透气，但是细菌、霉菌等污染物会不会也随着溜进去呢?
答：（1）盖子很松，属于半开放培养，这样的目的是透气(实际上是为了使培养皿外的co2能够与培养皿充分交换，维持培养基的pH值)。
（2）有利必有弊，这样增加了污染的可能性。此外这样还会使培养皿内的液体蒸发，这对于精确定量的药物来说就显得值得注意了。所以以下二条措施是必须的：
a培养箱内空气必须清洁(定期紫外线照，酒精擦洗，尽量少开关培养箱)
b培养箱内的湿度必须始终保持为100%(培养箱内放置无菌蒸馏水的水槽)。注意无菌操作！
2、我的细胞接种培养板，细胞总是聚集在周边部分，该如何处理啊?我看有的战友的细胞却是聚集在中间，是不是板子的质量问题?
答：请问你的细胞是如何混匀的?是滴管吹打还是振荡培养板?如果是后者，而且是转圈摇匀的话，很有可能由于离心力的作用使细胞甩到周边部分，导致细胞中间少，四周多！自己可以试试！
一个好办法：在你培养种板之前，把培养板放入培养箱里进行几个小时的饱和后再取出，种入细胞时力量要轻，可采取用滴头在培养板孔的侧面慢慢加入让细胞悬液流入板孔中，培养的细胞基本是均匀生长。记住千万不要用振荡器振荡，否则你的细胞就会想你说得那样聚积在一起。
3、我的细胞传代很正常，但一种到六孔板里(不管加药和对照)，总有两三个孔(随机)细胞长得不好，很小，像破碎了。有人遇到过这种情况吗?到底是啥原因呢?
答：可能跟你加液的温度有关。如果你细胞刚刚拿出来换液加液，培养基也是从4度冰箱拿出来不久，很容易细胞就会冻死了。建议你最好把培养基先在培养箱里边孵育15min先。
另外，跟你细胞的生长状态也有关。加药之前的细胞可以用高点的血清浓度培养。保证细胞状态良好。
或者放在37度水浴锅里孵育也可以，或者是培养板本身的问题，你再换换其它培养板试试看。再有可能就是细胞状态问题了，种板时的血清浓度调高试一下。
4、最近几天，我用六孔培养板接种细胞，培养24小时后更换培养基，在更换培养基之前，显微镜观察到细胞贴壁，状态非常的好，更换了培养基后，立即用显微镜观察，发现每个孔中都近乎有一半的细胞表现出近乎死亡的状态。细胞变得非常小，产生大量的碎片，而另一半的细胞一切正常，异常细胞与正常细胞之间存在一条分水岭，上半个圆是好的，下半个圆就不好，这是怎么一回事?
答：你可以看一下是不是以下这几个原因
a、培养板没放水平；
b、你的培养液如何，如果培养液过期，细胞就不会贴壁。换一点新配制的培养液试一试
c、可能是板的问题，换一个牌子的板或换用培养瓶就没问题了。
d、换培养基的时候有没有注意风机的影响，特别是所需换液的培养板很多时，容易使细胞因风吹失水而干缩破裂。如果如此，换液时应该逐个培养板进行，别怕浪费吸管，注意操作的效率!
5、把细胞消化接种到24孔板之后，已经四天了，老是每孔的中间部分长不满，每天换液时都用PBS 清洗，第二天换液时都出现同样的情况，每孔的边缘长的很好，中央大量死细胞?
答：如果细胞周围密而中间稀疏，大约有如下原因：
培养液加得太少。主要是由于液体张力的问题。
培养箱底部的水是否少了；
细胞接种后震荡太厉害了。由于离心力作用导致细胞分布到周围。
细胞分布均匀与否有一点很关键，即每种细胞是有个体差异的，别人的细胞操作不一定适合于你。所以要靠自己摸索，且找出专属于自己细胞的一套规律，有如下经验：
（1）所有待接种的细胞悬液在种板前一定要用吸管混匀。
（2）按资料记载，24孔板的液体量为1ml，其实1ml的量足矣。
（3）接种时，要慢慢加样，且记得轻微旋转枪头，加样不能太快，避免细胞在一个加样处聚集，且注意在不同的部位进行加样，即边加边活动枪头，人为使细胞趋于均匀分布。这样做对细胞均匀分布有一定效果。
用酶标板检测冠状病毒IgM/IgG的操作步骤
1．加样品：将标本稀释液100ul（或2滴）加到包被板内（预留阴阳性及空白对照2－5孔），将待检血清用PBS或生理盐水按1：20稀释后取10ul加入反应孔内。
2．加对照：加入阴性对照1－3孔，阳性对照1孔，各100ul对照血清。空白对照1孔空置。
3．温育：将反应板震荡使样品混匀后，置37℃温箱或水浴反应20分钟。
4．洗板：用蒸馏水将浓缩洗涤液15ml稀释至300ml。（1）手洗：将反应板孔内容物倾出，将洗涤液注满反应孔，放置30秒钟后用力甩去，如此重复5次后拍干。（2）机洗：5次，每孔注入洗涤液200ul或注满，停留30秒钟后吸尽拍干。
5．加酶标工作液：每孔加入100ul（或2滴）酶标工作液，置37℃温箱反应20分钟后，洗板5次，洗板操作同步骤4。
6．显色和终止反应：将底物A、B液各50ul（或1滴）加到反应孔内，37℃避光显色10分钟。每孔加入终止液50ul（或1滴）混匀终止反应。
结果分析：
1．酶标仪设定波长450nm，先用空白调零，然后测定各孔OD值；如果选用双波长测定，不必设置空白对照孔。
2．当阴性对照平均OD值小于0.08，阳性对照（pc）OD值大于0.30时，说明试剂盒有效且实验操作正确，否则应当重复试验。
3．临界值（CUT—OFF VALUE）＝0.15＋阴性对照平均（NC）OD值（当阴性平均OD值小于0.05时，按0.05计算；当阴性平均OD值大于或等于等于0.05时按实际值计算）。
4．标本OD值≤临界值为阴性，标本OD值>临界值为阳性。
如何用PPT三步绘制细胞培养板
1、利用曲线工具绘制两个透视矩形，如果不会画，去找张培养板的图片，描一下轮廓即可，将其中一个矩形略微缩小，剪除一个角，在小矩形里面绘制6个椭圆；
2、把椭圆组合成一个图层，总共三个图层，且把线条颜色改成第5个灰色，1磅大小；
3、按照如下三维参数设置各个图层，上面两个图层深度为150磅，最下面的图层为80磅，且第二和第三个图层的曲面为第2个灰色、1磅；注意的是，三个图层使用的材料为半透明粉，光源为三点，角度为140°
4、调整三个图层位置，使之形成一个细胞培养板，在此过程中，可能需要右键-编辑顶点，拖动顶点位置，使得三个图层的透视关系更符合实际情况；
5、绘制培养板里面的溶液：先根据每个空所产生的白色空白区域（下图箭头所示部分）用曲线工具描出形状，然后红色色填充、红色1磅实线，设置深度为150磅、光源设置为发光（0°），材料和旋转角度和前面图形相同；
6、6个孔都绘制上溶液，最终效果图如下。
